一、实验原理：
将碱性溶液与肥料样品充分混合，分离蛔虫卵，然后用密度较蛔虫卵密度大的溶液为漂浮液，是蛔虫卵漂浮在溶液的表面，从而收集检验。
二、仪器设备：
往复式振荡器；天平；离心机；抽滤瓶；真空泵；显微镜；恒温培养箱；金属丝圈；高二特曼氏漏斗；微孔火棉胶滤膜及其他试验室常用仪器、物品等。
三、检验步骤：
1、样品处理：
称取5.0 g~10.0 g样品（颗粒较大的样品应先进行研磨），放于容量为50 mL离心管中，注入氢氧化钠溶液25 mL~30 mL，另加玻璃珠约10粒，用橡皮塞塞紧管口，放置在振荡器上，静置30 min后，以200r/min~300r/min频率振荡 10min~15min。振荡完毕，取下离心管上的橡皮塞，用玻璃棒将离心管上的样品充分搅匀，再次用橡皮塞塞紧管口，静置15min~30min后，振荡 10min~15min。
2、离心沉淀：
从振荡器上取下离心管，拔掉橡皮塞，用滴管吸取蒸馏水，将附着于橡皮塞上和管口内壁的样品冲入管中，以2000r/min~2500r/min速度离心3min~5min后，弃去上清液。然后加适量蒸馏水，并用玻璃棒将沉淀物搅起，按上述方法重复洗涤三次。
3、离心漂浮：
往离心管中加入少量饱和硝酸钠溶液，用玻璃棒将沉淀物搅成糊状后，再徐徐添加饱和硝酸钠溶液，随加随搅，直加到离管口约1 cm为止，用饱和硝酸钠溶液冲洗玻璃棒，洗液并入离心管中，以2000r/min~2500r/min速度离心3min~5min。
用金属丝圈不断将离心管表层液膜移于盛有半杯蒸馏水的烧杯中，约30次后，适当增加一些饱和硝酸钠溶液于离心管中，再次搅拌、离心及移置液膜，如此反复操作3次~4次，直到液膜涂片在低倍显微镜下观察不到蛔虫卵为止。
4、抽滤镜检：
将烧杯中混合悬液，通过覆以微孔火棉胶滤膜的高二特曼氏漏斗抽滤。若混合悬液的浑浊度大，可更换滤膜。
抽滤完毕，用弯头镊子将滤膜从漏斗的滤台上小心取下，置于载玻片上，滴加二、三滴甘油溶液，于低倍显微镜下对整张滤膜进行观察和蛔虫卵计数。当观察有蛔虫卵时，将含有蛔虫卵的滤膜进行培养。
5、培养：
在培养皿的底部平铺一层厚约1 cm的脱脂棉，脱脂棉上铺一张直径与培养皿相适的普通滤纸。为防止霉菌和原生动物的繁殖，可加入甲醛溶液或甲醛生理盐水，以浸透滤纸和脱脂棉为宜。
将含蛔虫卵的滤膜平铺在滤纸上，培养皿加盖后置于恒温培养箱中，在28℃~30℃条件下培养，培养过程中经常滴加蒸馏水或甲醛溶液，使滤膜保持潮湿状态。
6、镜检：
培养10 d~15 d，自培养皿中取出滤膜置于载玻片上，滴加甘油溶液，使其透明后，在低倍显微镜下查找蛔虫卵，然后在高倍显微镜下根据形态，鉴定卵的死活，并加以计数。镜检时若感觉视野的亮度和膜的透明度不够，可在载玻片上滴一滴蒸馏水，用盖玻片从滤膜上刮下少许含卵滤渣，与水混合均匀，盖上盖玻片进行镜检。
7、判定：
凡含有幼虫的，都认为是活卵，未孵化或单细胞的都判为死卵。
四、结果计算：
结果见公式（1）：
式中：
K—蛔虫卵死亡率，％；
N1—镜检总卵数；
N2—培养后镜检活卵数。